Western Blot(WB)作為生命科學與醫學研究中驗證蛋白表達的核心實驗,其數據嚴謹性很重要。
2026 年以來,頂刊對 WB 實驗的要求迎來全面收緊:從內參蛋白驗證到原始圖像提交,一系列新規成為投稿硬性門檻,不少課題組因未及時適配,遭遇論文返修、發表延期甚至畢業受阻,最近隔壁實驗室的師兄,就在 WB 上吃了虧。
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哎,我們組一師兄投《Nature Communications》 的稿,因沒驗證 GAPDH 穩定性,被要求全重做 WB 數據了。
這也太影響進度了,畢業怕是都要受牽連吧?
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可不是嘛,而且這不是個例,是 NC 2026 WB 新規的硬性要求。
聽說這標準還推廣到整個 Nature 子刊矩陣了,以后頂刊投稿這關必過啊。
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長期以來,科研人員習慣性選用GAPDH、β-actin 作為內參蛋白,卻極少驗證其在藥物處理、細胞脅迫、組織特異性等特定實驗條件下的表達穩定性,這種「想當然」的操作模式,使得 WB 數據的可重復性與準確性大打折扣。
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《Nature Communications》Western blot 要求
多刊同步收緊
內參穩定性成硬性指標
值得關注的是,收緊 WB 投稿規范的并非只有《Nature Communications》,《JBC》、《Drug Metabolism and Disposition》、《Acta Pharmacologica Sinica》、《British Journal of Pharmacology》、《JBMR Plus》等多本權威期刊均已同步更新要求,明確將內參蛋白表達穩定性驗證列為硬性指標。
內參蛋白若未經驗證存在表達不穩定的情況,直接作為 WB 實驗歸一化對照會造成定量結果出現偏差,使得失去準確性與科學性,還會在投稿時被期刊審稿人質疑數據嚴謹性與可重復性,輕則被要求補充驗證實驗、重做全部 WB 數據,造成課題進度滯后、論文發表延期,重則直接被拒稿。
各大期刊 WB 內參要求匯總表
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內參不穩定?
可以考慮替代方案-總蛋白染色
針對傳統管家蛋白(如 β-actin、GAPDH)在特定實驗條件下易出現表達波動、難以滿足定量歸一化可靠性要求的問題,各期刊均明確提出了更為穩健的替代策略 ——總蛋白染色。相較于易受細胞狀態、處理因素影響的單一內參蛋白,總蛋白染色可直接反映每泳道上樣的總蛋白量,能更全面、客觀地校正上樣與轉印差異。
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《JBC》Western blot 要求截圖
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《Drug Metabolism and Disposition》Western blot 要求截圖
(部分期刊推薦使用總蛋白染色)
總蛋白染色包括:Stain-Free(免染)、麗春紅 S、固綠、考馬斯亮藍等,其中 Stain-Free 是當前較為主流、期刊認可度高的總蛋白內參方法。
Stain-Free 總蛋白染色是一種基于三氯化合物熒光標記的 WB 內參歸一化技術,通過在電泳后對膜上全部蛋白進行熒光染色,實現對總蛋白上樣量的精準定量,替代傳統內參蛋白(如 GAPDH/ACTIN),避免實驗處理對內參蛋白表達的干擾,同時具備線性范圍寬、靈敏度高、可全程可視化的優勢。
無需驗證內參穩定性,直接滿足期刊歸一化要求;
與常規 WB 流程兼容,同膜完成總蛋白成像與目標蛋白檢測;
定量更準確、線性范圍更寬,數據更易通過審稿。
現在識別下方二維碼,即可申請Stain-Free 免費試用以及全套免染 Western 實驗流程,精準定量總蛋白上樣量、替代傳統內參蛋白,規避內參表達干擾:
更多全領域通用 WB 要求
未裁剪原圖必須提交
除內參規范外,幾乎所有生物、醫學類頂刊已形成統一要求:投稿時必須提交未裁剪(uncropped)的 WB 原始膜圖作為補充數據,嚴禁對圖像進行隨意裁切、拼接或過度修飾。這一要求旨在保障實驗數據的可追溯性與可重復性,是當前頂刊審稿的核心核查點。
實驗室需建立完善的數據留存機制,妥善保管原始圖像、成像參數及完整實驗記錄,部分代表性出版集團與期刊的具體要求如下:
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綜上,面對近年來全面更新的 WB 投稿新規,科研人唯有及時調整實驗操作規范,才能有效規避投稿風險。無論是做好內參蛋白的穩定性驗證,還是選用 Stain-Free 總蛋白染色技術作為替代方案,亦或是嚴格留存未裁剪的原始實驗圖像,都是適配新規的關鍵舉措。
為幫助科研人解決原圖處理、數據存檔、投稿規范適配等實際問題,伯樂生命科學特開通專家免費咨詢通道,為科研人員提供一對一的專業指導,助力大家順利通過審稿,讓研究成果更快、更順利地發表。
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