
基因編輯技術(shù)的 迅速發(fā)展 為 解析復(fù)雜發(fā)育過程中的基因功能 提供了 重要工具 。然而, 相關(guān)技術(shù) 在 斑馬魚中的應(yīng)用仍存在一些局限性 : 例如 CRISPR/Cas9 介導(dǎo)的全胚基因敲除 往往 導(dǎo)致胚胎 早期 死亡,而 Cre/ loxP 條件性敲除系統(tǒng)則受限于 loxP 序列的 種系敲入 效率 率及位點 的 限制 等因素的影響 。上述 問題在一定程度上阻礙了針對 斑馬魚時空特異性發(fā)育調(diào)節(jié)機制的 深入研究 。
近日 日 ,清華大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院孟安明課題組在Journal of Cell Biology發(fā)表題為 “ 通過 4-OHT 誘導(dǎo)型 Cas9 在整胚中實現(xiàn) 時期及 組織特異性基因編輯 ”
Stage- and tissue-specific gene editing using 4-OHT
inducible Cas9 in whole organism的研究論文。該研究在斑馬魚中建立了一套生殖細胞系特異、可誘導(dǎo)基因編輯系統(tǒng),并證明通過4-OHT處理,可在不同發(fā)育階段特異敲除生殖細胞靶基因實現(xiàn)時間特異性及組織特異性雙重調(diào)。此外,該誘導(dǎo)Cas9蛋白在小鼠早期胚胎中同樣可以實現(xiàn)條件性基因敲除,為跨物種研究提供了潛在工具
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研究 團隊基于 4- 羥基他莫昔芬 ( 4-hydroxytamoxifen , 4-OHT ) 與 突變 型 雌激素受體( estrogen receptor, ER )構(gòu)建了 4-OHT 誘導(dǎo)型 Cas 9 蛋白 n Cas9 ER T2 , 并 在 HEK293T 細胞系 中驗證 其在 4 -OHT 處理 后可誘導(dǎo) n Cas9 ER T2 蛋白 入核 進行 基因編輯。隨后,研究人員構(gòu)建了 生殖細胞 系 特異 表達 誘導(dǎo)型 Cas 9 蛋白 轉(zhuǎn)基因 斑馬魚 品系 Tg (piwil1: n Cas9 ERT2 -n3U) 和 泛 表達 g RNA 轉(zhuǎn)基因 斑馬魚 品系 Tg (U6:gRNA s , cryaa:CFP) 。實驗結(jié)果表明, 該誘導(dǎo)型 n Cas9 ER T2 蛋白在斑馬魚胚 胎 原始生殖細胞( PGCs ) 及雌魚卵母細胞中均 成功響應(yīng) 4-OHT 誘導(dǎo), 實現(xiàn)時期及組織特異性基因編輯。 與 傳統(tǒng)的 組織特異性基因 編輯 系統(tǒng)相比 , 該系統(tǒng) 通過控制基因編輯 的 時間,有效避免 了 早期 胚胎 體細胞 脫靶 編輯 , 凸顯該技術(shù)在胚胎早期 P GC s 研究中的重要價值 。 利用該系統(tǒng), 研究人員 進一步 探究了 tbx 16 基因在 PGC 遷移過程中的功能,發(fā)現(xiàn) P GC 特異敲除 tbx 16 基因會影響 P GC 遷移, 為 理解 tbx16 在斑馬魚胚胎發(fā)育中的功能 提供了新的實驗證據(jù) , 并 拓展了對 其 參與斑馬魚 P GC 發(fā)育過程 調(diào)控 的認知。
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該時空特異性基因編輯系統(tǒng)及轉(zhuǎn)基因斑馬魚品系模式圖
清華大學(xué)生命科學(xué)學(xué)院 吳小童 副研究員 及孟安明院士 為本文通訊作者; 2024 屆博士畢業(yè)生李雅琪 、 2025 屆博士畢業(yè)生張渭瑩、危子航為本文的共同第一作者 ;博士研究生李晗、圖爾蓀江·艾則孜、 博士后 劉鑫 與 鄭濤 等 在 該研究 做出 重要貢獻; 北京科技 大學(xué) 幸岑璨 副教授 參與 了 課題指導(dǎo) 。
論文鏈接:https://doi.org/10.1083/jcb.202412216
制版人:十一
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